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DEAE-Sephadex A-50柱層析純化免疫球蛋白

更新時間:2013-06-13點(diǎn)擊次數(shù):1567

(一) 原理

  DEAE-SephadexA-50(二乙基氨基乙基-葡聚糖A-50)為弱堿性陰離子交換劑。用NaOH將CL-型轉(zhuǎn)變?yōu)镺H-型后,可吸附酸性蛋白。血清中的γ球蛋白屬于中性蛋白(等電點(diǎn)為PH6.85~7.5),其余均屬酸性蛋白。在PH7.2~7.4的環(huán)境中,酸性蛋白均被DEAE-Sephadex A-50吸附,只有γ球蛋白不被吸附。因此,通過柱層析γ球蛋白便可在洗脫中先流出,而其他蛋白則被吸附在柱上,從而便可分離獲得純化的IgG。DEAE-sephadexA-50柱層析是離子交換層析的一種。

  (二)試劑和器材

  1、試劑:

 ?。?)鹽析提取的人γ球蛋白;

 ?。?)0.5N NaOH,0.5N HCl 2M NaCl,10%NaN3;

  (3)DEAE-Sephadex A-50,聚乙二醇(PEG);

 ?。?)0.1M, PH7.4 PB(配制見鹽析部分);

  2、器材:

 ?。?)層析玻璃柱(1.3×40cm),滴定鐵架,自由夾,螺旋夾,尼龍紗(200目);

 ?。?)普通冰箱,751桮型紫外分光光度計,電導(dǎo)儀、抽濾裝置(包括抽氣機(jī)、干燥瓶、布氏漏斗、橡皮墊圈、抽濾瓶),PH計;

  (3)透析袋、座標(biāo)紙、濾紙、PH精密試紙;

  (4)量筒、燒杯、試管、吸管、滴管、滅菌小瓶等。

  (三) 操作步驟

  1、DEAE-Sephadex A-50預(yù)處理

  稱DEAE-Sephadex A-50(下稱A-50)5克,懸于500ml蒸餾水,1小時后傾去上層細(xì)粒。按每克A-50加0.5N NaOH 15ml的比例,將A-50浸泡于0.5N NaOH中,攪勻,靜置30分鐘,裝入布氏漏斗(墊有2層濾紙)中抽濾,并反復(fù)用蒸餾水抽洗至PH呈中性;再以0.5N HCl同上操作過程處理,zui后以0.5N NaOH再處理一次。處理完后,將A-50浸泡于0.1M,PH 7.4 PB中過夜。

  2、裝柱

 ?。?)將層析柱垂直固定于滴定鐵架上,柱底墊一園尼龍紗,出水口接一乳膠或塑料管并關(guān)閉開關(guān)。

 ?。?)將0.1M,PH7.4 PB沿玻璃棒倒入柱中至1/4高度,再倒入經(jīng)預(yù)處理并以同上緩沖液調(diào)成稀糊狀的A-50。待A-50凝膠沉降2-3cm厚時,啟開出水口螺旋夾,控制流速1ml/分鐘,同時連續(xù)倒入糊狀A(yù)-50凝膠至所需高度。

  (3)關(guān)閉出水口,待A-50凝膠*沉降后,柱面放一園形濾紙片,以橡皮塞塞緊柱上口,通過插入橡皮塞之針頭及所連接的乳膠或塑料管與洗脫液瓶相連接。

  3、平衡:啟開出水口螺旋夾,控制流速12-14滴/分鐘,使約2倍床體積的洗脫液流出。并以PH計與電導(dǎo)儀分別測定洗脫液及流出液之PH值與離子強(qiáng)度是否相同。達(dá)到一致時關(guān)閉出水口,停止平衡。

  4、加樣及洗脫:

  啟開上口橡皮塞及下口螺旋夾,使柱中液體緩慢滴出,當(dāng)柱面液體與柱面相切時,立即關(guān)閉出水口,以毛細(xì)滴管沿柱壁加入樣品(體積應(yīng)<床體積的2%,蛋白濃度以<100mg為宜)。松開出水口螺旋夾使柱面樣品緩慢進(jìn)入柱內(nèi),至與柱面相切時,立即關(guān)閉下口,以少量洗脫液洗柱壁2-3次;再放開出水口,使洗液進(jìn)入床柱,隨后立即于柱面上加入數(shù)ml洗脫液,緊塞柱上口,使整個洗脫過程成一密閉系統(tǒng)。并控制流速12~14滴/分鐘。

  5. 收集:開始洗脫的同時就以試管進(jìn)行收集。每管收集3~5ml。共收集10~15管。

  6. 測蛋白:以751-G型紫外分光光度計分別測定每管OD280nm,與OD260nm,按前述公式計算各管蛋白含量。并以O(shè)D280nm為縱座標(biāo),以試管編號為橫座標(biāo),繪制洗脫曲線。

  7. 合并、濃縮:將洗脫峰的上坡段與下坡段各管收集液分別進(jìn)行合并,以PEG(MW6000)洗縮至所需體積,加入0.02%NaN3防腐劑,于4℃保存?zhèn)溆谩?/font>

  8. A-50凝膠的再生:在柱上先以2M NaCl洗柱上的雜蛋白至流出液的OD280nm<0.02,再以蒸餾水洗去柱中鹽。然后按預(yù)處理過程將A-50再處理一遍即達(dá)再生。近期用時泡于洗脫緩沖液中4℃保存;近期不用時,以*洗2次,再置50℃溫箱烘干,裝瓶內(nèi)保存。

  (四) 注意事項(xiàng)

  1. 柱的選擇:從理論上說,只要柱足夠長,就得獲得理想的分辨率,但由于層析柱流速同壓力梯度有關(guān),柱長增加使流速減慢,峰變寬,分辨率降低。柱的直徑增加,使液體流動的不均勻性增加,分辨率明顯下降。

  2. 純化過程必須嚴(yán)格控制脫緩沖液的PH及離子強(qiáng)度。樣品與A-50凝膠必須用洗脫緩沖液*平衡后,才能進(jìn)行柱層析。

  3. 所裝的柱床必須表面平整,無溝流及氣泡,否則應(yīng)重裝。

  4. 洗脫過程中應(yīng)嚴(yán)格控制流速,且勿過快。

  5. 上樣的體積要小,濃度不宜過高。

  6. 加樣及整個洗脫過程中,嚴(yán)防柱面變干。

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